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对α-1-抗胰蛋白酶糖基化进行直接的LC-MS/MS分析

https://www.cphi.cn   2018-03-05 11:31 来源:生物制品圈 作者:ZXQ

已经开发了以液相色谱串联质谱(LC-MS/MS)为基础的方法来区分糖肽的核心-和天线-岩藻糖的糖基化。通过完整的糖肽分析可以解析不同的糖基化位点(异质性)以及每个位点上可能存在的多种糖链(微观异质性)。

       补充信息

       图S1糖肽1,糖肽2或糖肽3具有相同的最适低能量HCD CE24。

       图S2所有鉴定的具有不同糖基修饰类型糖肽:糖肽1(含有Asn107位点),糖肽2(含有Asn271位点)和糖肽3(含有Asn70位点)的低能量HCD MS2,高能量HCD MS3和CID MS2图谱。

       图S3唾液酸酶/半乳糖苷酶消化的A1AT样品,唾液酸酶/半乳糖苷酶/α 1-2,3,4,6岩藻糖苷酶消化的A1AT样品以及唾液酸酶/半乳糖苷酶/α 1-3,4岩藻糖苷酶消化的A1AT样品中的岩藻糖基化糖肽的XIC(提取离子流图)图谱。

       表1.双重消化后的A1AT糖肽以及每个位点的核心-和天线-岩藻糖基化的相对峰面积的总结。


       表2.卡方检验用于比较从A1AT蛋白质释放的糖链类型(数据来源于以前的结果[19])和糖肽1(含有Asn107位点)的糖链修饰类型或糖肽2(含有Asn271位点)的糖链修饰类型(表2)之间的主要糖链修饰类型的相对峰强度。

       * p值< 0.05 认为差异显著


       图1 鉴定A1AT糖基化的实验工作流程。首先将糖基化的A1AT酶切成肽段,然后通过唾液酸酶/半乳糖苷酶双重消化进行糖基的切除。将糖肽进行直接LC-MS/MS分析而不需要释放糖链。

       图2在不同的离子传输管温度,喷雾电压和RF%设定条件下,具有A2和FA2糖基修饰类型的A1AT糖肽(Asn271)的源内裂解。

       图3具有A2FG糖基修饰类型的A1AT糖肽(Asn271)的图谱:(A)低能量HCD MS2图谱;(B)低能量HCD诱导的高能量HCD MS3图谱;(C)低能量HCD诱导的CID MS2;(D)糖肽裂解的示意图。

       图4 各种低能量HCD碰撞能量下具有A2,FA2和A2FG糖基修饰类型糖肽(Asn 271)的MS2裂解模式,表明CE24下的低能量HCD产生信号最强的Y1离子(肽+GlcNAc)。

       图5 各种高能量HCD碰撞能量下糖肽(Asn271)Y1离子(肽+GlcNAc)的MS3裂解模式,表明在CE35下的高能量HCD提供了的裂解图谱。

       图6 在各种CID碰撞能量下具有A2,FA2和A2FG糖基修饰类型的糖肽(Asn271)的MS2裂解模式,表明在CE30或CE35下这些糖肽获得了相似的裂解图谱。

       图7 通过唾液酸酶/半乳糖苷酶消化来区分糖肽(Asn271)的核心-和天线-岩藻糖基化(A:保留时间;A.1:FA2的图谱;A.2:A2FG的图谱)。作为对照,唾液酸酶消化的情况下没有观察到差异(B:保留时间;B.1:A2G2(F)的图谱)。

       图8 在3D结构中A1AT的三个糖基化位点Asn70,Asn107和Asn271标记为红色,通过质谱检测到的肽段标记为绿色。

       

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